RPMI-1640培養基不僅是科研工作者手中的得力助手，更是推動生命科學研究不斷前進的重要力量。在未來的日子里，隨著生命科學領域的不斷發展和創新，將繼續發揮其重要作用，為人類健康和科技進步貢獻更多的力量。
 

　　RPMI-1640培養基在細胞培養過程中的使用：
 

　　1.細胞復蘇后的換液
 

　　-當從凍存狀態復蘇細胞后，細胞接種到含有適量RPMI-1640培養基的培養瓶或培養皿中。一般接種密度根據細胞種類和實驗目的有所不同，例如對于貼壁細胞，每平方厘米可能需要接種數千個細胞。
 

　　-細胞接種后，將其放入37℃、CO2培養箱中培養。在細胞復蘇后的24小時內，需要觀察細胞的貼壁情況和狀態。當細胞貼壁后(一般貼壁細胞在接種后幾個小時內開始貼壁)，可以更換新鮮的RPMI-1640培養基，以去除復蘇過程中可能產生的一些對細胞有害的物質，如凍存保護劑二甲基亞砜(DMSO)。
 

　　2.常規換液
 

　　-根據細胞的生長速度和代謝情況確定換液頻率。一般來說，對于生長較快的細胞，可能需要每2-3天換液一次；對于生長較慢的細胞，可以每3-4天換液一次。
 

　　-換液時，小心地吸出舊的培養基，注意不要吸到細胞。然后加入適量的新鮮RPMI-1640培養基，一般以覆蓋細胞單層為宜。例如，對于一個T-25培養瓶中的細胞，每次可以加入3-5ml的培養基。
 

　　3.傳代培養
 

　　-當細胞生長達到一定的匯合度(例如，貼壁細胞匯合度達到80-90)時，需要進行傳代。首先棄去舊的培養基，用適量的磷酸鹽緩沖液(PBS)清洗細胞，以去除殘留的培養基和細胞代謝產物。
 

　　-加入適量的胰蛋白酶-EDTA消化液(一般根據培養瓶或培養皿的底面積加入適量，如T-25培養瓶可以加入0.5-1ml)，將細胞消化下來。消化時間根據細胞種類和胰蛋白酶的活性而定，一般在室溫下消化幾分鐘，直到細胞變圓、開始脫落。
 

　　-加入含血清(如胎牛血清，終濃度一般為10左右)的RPMI-1640培養基終止消化，然后將細胞懸液轉移到離心管中，以適當的轉速(如1000rpm，離心5分鐘)離心收集細胞。
 

　　-棄去上清液，用適量的RPMI-1640培養基重懸細胞，然后按照合適的比例(如1:2或1:3等)將細胞接種到新的培養容器中，繼續培養。